动物性食品中青霉素G钠残留的热加工风险评估
发布时间：2021-11-11 00:01
青霉素是一类能破坏细菌细胞壁并在细菌繁殖期有杀菌作用的一类抗生素。对于革兰氏阳性菌以及部分革兰氏阴性球菌（脑膜炎球菌、淋球菌等）具有较强的杀菌作用。青霉素由于其高效、低毒性而被广泛的应用在临床医学和畜牧业上。近年来青霉素在畜牧养殖业上的滥用,导致其在动物性食品中的残留问题愈加严重。青霉素残留所导致的问题如食物过敏、耐药性的产生以及对肠道菌群的影响不断被报道。除此之外,临床上使用青霉素还可以导致如神经毒性、肝功能异常以及耳毒性等不良反应。青霉素的残留给公共卫生安全带来了诸多潜在的隐患。由于青霉素结构的特殊性,其在酸性、碱性、金属离子以及β-内酰胺酶存在的情况下易于分解。温度的改变也会影响青霉素的稳定性,使之生成多种分解产物。人们通常在日常烹饪过程中使用加热的方式如煎、炒、炖等方式来增加食物嫩熟程度和口感,并且消除肉类等动物性食品中残留的微生物。在此过程中,残留在食品中的青霉素会出现不同程度的分解,生成相应的分解产物。诸多学者报道了青霉素在不同加热温度、不同烹饪方法以及不同介质等条件下的分解情况以及分解产物,但是残留在动物性食品中的青霉素经过加热烹饪后的食品安全性评价却鲜有人报道。本研究以...
【文章来源】：吉林大学吉林省 211工程院校 985工程院校 教育部直属院校
【文章页数】：165 页
【学位级别】：博士
【部分图文】：
青霉素G钠的化学结构式
第一篇 文献综述 第 1 章 青霉素概述7图1.2 青霉素结构特征以及最初的几种猜想Figure 1.2 The structural characteristics of Penicillin G and possible structures ofPenicillin1.4 青霉素的作用机制以及临床和畜牧业中的应用青霉素具有显著的抗菌活性[24]。青霉素在与细菌作用时，β-内酰胺环中的酰胺键与细菌竞争转肽酶并以共价键的方式结合形成乙酰转化酶，使细菌的转肽酶失活，进而阻止了转肽作用的进行，阻碍粘肽的形成。这不仅造成细菌细胞壁合成受阻，使其失去细胞壁渗透屏障的保护，还使得细菌细胞壁中的自溶酶抑制剂失活而活化自溶酶，导致细菌自身细胞的溶解。同时由于细菌内渗透压高，在体液稳态环境中不断渗入水分，导致细菌细胞肿胀、变形，最终导致抑制细菌的生长甚至死亡。从细菌的角度讲，大部分已知的细菌以及衣原体等细胞膜上均具有可以和青霉素或其他β-内酰胺类抗生素结合的蛋白
随后在C-5处形成5S同分异构体。青霉素遇到胺或者醇时，胺或醇也同样会向β-内酰胺环进攻，生成青霉噻唑酸酰胺化合物（amide of penicilloic acid）或者青霉噻唑酸酯（ester of penicilloic acid）。图3.1列举了青霉素在酸性以及碱性条件下的降解途径。(Deshpande etc. 2004, Curr SCI.)图3.1 青霉素在酸性及碱性条件下的降解途径Figure 3.1 Pathways of penicillin degradation in acidic and alkaline conditions3.1.3 β-内酰胺酶存在条件下青霉素的稳定性青霉素在β-内酰胺酶或者青霉素酶的存在下同样会发生分解反应[12]。β-内酰胺酶或者青霉素酶大多数存在于如大肠杆菌、枯草杆菌、变形杆菌以及其他革兰
【参考文献】：
期刊论文
[1]高效液相色谱紫外法同时检测鸡蛋中5种青霉素类药物残留的研究[J]. 李雷霆,刘均华,刘宝涛,付红蕾,邹明. 中国畜牧兽医. 2017(08)
[2]青霉噻唑酸的制备及检测[J]. 罗智敏,周会艳,王薇薇,孙敏,白荷荷,杜玮,傅强. 药物分析杂志. 2013(04)
[3]HPLC法定量测定原乳中青霉素钾酶解产物的研究[J]. 高颀,鲍晓瑾,倪炜华. 中国测试. 2012(02)
[4]牛奶中β-内酰胺类抗生素残留检测方法的研究进展[J]. 刘瑛,魏清芳,王嘉林,辛爱玲. 中国卫生检验杂志. 2011(09)
[5]动物源性食品中β-内酰胺类药物残留检测研究进展[J]. 袁萍,刘亚风,祝伟霞,杨娜,杨冀州,魏蔚. 检验检疫学刊. 2010(03)
[6]高效液相色谱在乳品抗生素残留检测中的应用[J]. 孙艳侠. 山西农业科学. 2010(03)
[7]免疫分析标记技术研究进展[J]. 王宇,沈玉栋,雷红涛,刘文字,王弘,孙远明. 食品工业科技. 2007(10)
[8]牛奶中残留青霉素类抗生素检测方法的研究进展[J]. 崔小军,王硕. 食品研究与开发. 2005(04)
[9]牛奶中抗生素残留两种检测方法的论证和应用[J]. 丁洁,陈晓蔚,曾理,贾力敏,江晓,王炜. 中国卫生检验杂志. 2004(05)
[10]青霉素类抗生素的临床应用[J]. 付文贵. 兽药与饲料添加剂. 2004(04)
博士论文
[1]川金丝猴源柯萨奇B3病毒的分子特征及其致病性初步研究[D]. 贺文琦.吉林大学 2009
硕士论文
[1]动物源食品中β-内酰胺类抗生素残留的超高效液相色谱—串联质谱分析方法研究[D]. 宋志超.郑州大学 2009
[2]放射性受体分析法快速筛检动物组织中β-内酰胺类兽药残留[D]. 张佳.福建农林大学 2007
本文编号：3488203
【文章来源】：吉林大学吉林省 211工程院校 985工程院校 教育部直属院校
【文章页数】：165 页
【学位级别】：博士
【部分图文】：
青霉素G钠的化学结构式
第一篇 文献综述 第 1 章 青霉素概述7图1.2 青霉素结构特征以及最初的几种猜想Figure 1.2 The structural characteristics of Penicillin G and possible structures ofPenicillin1.4 青霉素的作用机制以及临床和畜牧业中的应用青霉素具有显著的抗菌活性[24]。青霉素在与细菌作用时，β-内酰胺环中的酰胺键与细菌竞争转肽酶并以共价键的方式结合形成乙酰转化酶，使细菌的转肽酶失活，进而阻止了转肽作用的进行，阻碍粘肽的形成。这不仅造成细菌细胞壁合成受阻，使其失去细胞壁渗透屏障的保护，还使得细菌细胞壁中的自溶酶抑制剂失活而活化自溶酶，导致细菌自身细胞的溶解。同时由于细菌内渗透压高，在体液稳态环境中不断渗入水分，导致细菌细胞肿胀、变形，最终导致抑制细菌的生长甚至死亡。从细菌的角度讲，大部分已知的细菌以及衣原体等细胞膜上均具有可以和青霉素或其他β-内酰胺类抗生素结合的蛋白
随后在C-5处形成5S同分异构体。青霉素遇到胺或者醇时，胺或醇也同样会向β-内酰胺环进攻，生成青霉噻唑酸酰胺化合物（amide of penicilloic acid）或者青霉噻唑酸酯（ester of penicilloic acid）。图3.1列举了青霉素在酸性以及碱性条件下的降解途径。(Deshpande etc. 2004, Curr SCI.)图3.1 青霉素在酸性及碱性条件下的降解途径Figure 3.1 Pathways of penicillin degradation in acidic and alkaline conditions3.1.3 β-内酰胺酶存在条件下青霉素的稳定性青霉素在β-内酰胺酶或者青霉素酶的存在下同样会发生分解反应[12]。β-内酰胺酶或者青霉素酶大多数存在于如大肠杆菌、枯草杆菌、变形杆菌以及其他革兰
【参考文献】：
期刊论文
[1]高效液相色谱紫外法同时检测鸡蛋中5种青霉素类药物残留的研究[J]. 李雷霆,刘均华,刘宝涛,付红蕾,邹明. 中国畜牧兽医. 2017(08)
[2]青霉噻唑酸的制备及检测[J]. 罗智敏,周会艳,王薇薇,孙敏,白荷荷,杜玮,傅强. 药物分析杂志. 2013(04)
[3]HPLC法定量测定原乳中青霉素钾酶解产物的研究[J]. 高颀,鲍晓瑾,倪炜华. 中国测试. 2012(02)
[4]牛奶中β-内酰胺类抗生素残留检测方法的研究进展[J]. 刘瑛,魏清芳,王嘉林,辛爱玲. 中国卫生检验杂志. 2011(09)
[5]动物源性食品中β-内酰胺类药物残留检测研究进展[J]. 袁萍,刘亚风,祝伟霞,杨娜,杨冀州,魏蔚. 检验检疫学刊. 2010(03)
[6]高效液相色谱在乳品抗生素残留检测中的应用[J]. 孙艳侠. 山西农业科学. 2010(03)
[7]免疫分析标记技术研究进展[J]. 王宇,沈玉栋,雷红涛,刘文字,王弘,孙远明. 食品工业科技. 2007(10)
[8]牛奶中残留青霉素类抗生素检测方法的研究进展[J]. 崔小军,王硕. 食品研究与开发. 2005(04)
[9]牛奶中抗生素残留两种检测方法的论证和应用[J]. 丁洁,陈晓蔚,曾理,贾力敏,江晓,王炜. 中国卫生检验杂志. 2004(05)
[10]青霉素类抗生素的临床应用[J]. 付文贵. 兽药与饲料添加剂. 2004(04)
博士论文
[1]川金丝猴源柯萨奇B3病毒的分子特征及其致病性初步研究[D]. 贺文琦.吉林大学 2009
硕士论文
[1]动物源食品中β-内酰胺类抗生素残留的超高效液相色谱—串联质谱分析方法研究[D]. 宋志超.郑州大学 2009
[2]放射性受体分析法快速筛检动物组织中β-内酰胺类兽药残留[D]. 张佳.福建农林大学 2007
本文编号：3488203
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