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酸铝胁迫下柠檬酸对灰木莲幼苗生长生理及养分分配的影响

发布时间:2020-10-19 20:35
   灰木莲(Magnoliaceaeglanca Blume)是木兰科木莲属植物,属于我国的珍贵树种之一。由于其干形通直、树姿优美、花果华丽、速生等特性,极具观赏价值和经济价值。铝毒害是限制酸性土壤中植物生长和作物生产以及森林退化的主要因子,而柠檬酸能够与铝螯合成无毒性的复合物,大大降低或者消除铝对植物的毒害,因此研究柠檬酸对灰木莲幼苗铝毒害的缓解效应有利于提高苗木质量、保护稀有树种的种质资源等,而且能够为木兰科树种在铝胁迫研究方面提供基础的数据参考。该研究以灰木莲幼苗作为试验材料,使用硫酸铝和柠檬酸交互处理苗木,铝有4个浓度梯度分别为0 mg/L、60mg/L(A1)、120mg/L(A2)、150mg/L(A3),在每个铝处理的基础上增施柠檬酸,设置4个浓度梯度分别为0 mmol/L、5 mmol/L(Nl)、10 mmol/L(N2)、15mmol/L(N3),未施铝和柠檬酸处理为空白对照组CK,该研究目的是分析铝和柠檬酸对灰木莲生长生理和养分分配的影响,研究灰木莲自身对铝胁迫的耐受范围和探讨不同浓度柠檬酸对灰木莲的解铝毒作用。主要研究结果如下:1.A2N3处理最有利于灰木莲幼苗苗高的生长;A3N3处理最有利于灰木莲幼苗地径的生长;A1N1处理最有利于灰木莲幼苗叶面积的增加,灰木莲叶形指数最大的是A1N3处理。铝处理下,生物量、根冠比和含水率均表现为低浓度促进高浓度抑制。对灰木莲根生物量、茎生物量和根冠比促进作用最大的是A3N2处理,对灰木莲幼苗叶生物量促进作用最大的是A1N2处理。2.A1N3处理最有利于提高灰木莲幼苗叶片的叶绿素a、叶绿素b的含量和叶绿素总量;A1N2处理最有利于提高灰木莲幼苗叶片的净光合速率(Pn)和气孔导度(Gs),胞间二氧化碳浓度(Ci)最高和最低的处理分别是A2N1和A3N2,而A1N2处理和A3N2处理分别有利于提高灰木莲幼苗叶片蒸腾速率(Tr)和水分利用效率。3.A3处理能够显著提高灰木莲幼苗叶片丙二醛(MDA)含量;可溶性糖和可溶性蛋白促进作用最为显著的分别为A3N3和A2N3处理;A1处理的灰木莲幼苗叶片多酚氧化酶(PPO)的活性最高;A3N3处理下灰木莲幼苗叶片的超氧化物歧化酶(SOD)活性和过氧化物酶(POD)活性最高;A1和A2处理下的灰木莲幼苗叶片的过氧化氢酶(CAT)活性显著提高,分别比空白对照CK高出187.3%和278.7%,其中A3N1处理对灰木莲幼苗叶片过氧化氢酶(CAT)活性的促进作用最为显著。4.A3N3处理有利于灰木莲幼苗根对全N的吸收,N3处理有利于提高灰木莲幼苗茎的全N含量,而N1处理对灰木莲幼苗叶中的全N含量促进效果最佳;N1、N3和A2N3处理分别对灰木莲幼苗根,茎和叶的全P含量促进效果最佳;A3N3、N3和A1N1分别对灰木莲幼苗根、茎和叶的全K含量促进效果最佳;A1N2处理有利于灰木莲幼苗根对全Ca的吸收,而A2N3和A2N3处理分别有利于提高灰木莲幼苗茎和叶的全Ca含量;N2、N1、A2N3处理分别对灰木莲幼苗根、茎和叶的全Mg含量促进效果最佳;对降低灰木莲幼苗根、茎和叶中铝含量最佳的是A1N3、A1N2和A1N3处理;N2处理有利于灰木莲幼苗根对全Zn的吸收,N3处理则对灰木莲幼苗茎和叶的全Zn含量均有最佳的促进效果;A2N3处理有利于提高灰木莲幼苗根和茎的全Fe含量,N3处理对灰木莲幼苗叶的全Fe含量促进效果最佳。5.净光合速率(Pn)、可溶性糖、可溶性蛋白、全N、全Ca和全Fe最有利于灰木莲幼苗苗高的生长,并且地径增量与可溶性糖呈极显著的正相关关系,而全A1与灰木莲幼苗的苗高和地径存在一定的负相关关系。总生物量与全N、叶绿素总量和净光合速率(Pn)显著正相关,全A1与生物量显著负相关;A3N2处理的苗木质量指数(QI)最高,说明该处理最有利于均衡灰木莲苗木的生长;根据主成分分析可知,在A1铝浓度下,柠檬酸缓解铝毒效应的最佳浓度是N1。A2铝浓度下,外源添加N2、N3浓度的柠檬酸可以有效促进灰木莲幼苗的生长,提高灰木莲幼苗内部有机产物合成以及改善各营养元素的利用状况。N3浓度的柠檬酸可以有效缓解A3浓度铝的胁迫效应。
【学位单位】:广西大学
【学位级别】:硕士
【学位年份】:2019
【中图分类】:S792.99
【部分图文】:

可溶性蛋白,灰木莲,可溶性糖含量,叶片


Fig.?3-3?Content?of?soluble?sugar?in?the?leaves?of?Magnoliaceae?glanca?Blume?under?different?treatments??3.3.3可溶性蛋白??180?r??a??.E?160?-?a??il??bcd?bed?■?■?^?JL??r?iliiiHiiilllill??CK?A1?A2?A3?Nl?N2?N3?AIN1?A1N2?AIN3?A2N1?A2N2?A2N3?A3N1?A3N2?A3N3??处理?Treaments??

灰木莲,超氧化物歧化酶,叶片,柠檬酸


啵泵仕岫曰夷玖?酌缟?ど?砑把?址峙洌康挠跋欤崳?3.3.5超氧化物歧化酶(SOD)??由图3-6可知,灰木莲幼苗叶片的超氧化物歧化酶(SOD)活性在不同处理下表现??出显著差异。在不同浓度的铝处理下,超氧化物歧化酶(SOD)活性的大小排序为AI??〉CK>A2>A3,并且A1处理比空白对照CK显著高出20.5%,而A2、A3处理分别比??空白对照CK显著低33.3%和46.4%;在不同浓度的柠檬酸处理下,超氧化物歧化酶??(SOD)活性的大小排序为N3〉N2>N1>CK,并且Nl、N2和N3处理分另IJ是空白对??照CK的1.85倍、].87倍和2.13倍;在A1处理下,随着柠檬酸浓度的提高,超氧化物??歧化酶(S0D)活性逐渐升高,大小排序为A1N2〉A1N3>CIC>A1N1;在A2处理下,??随着柠檬酸浓度的提高,超氧化物歧化酶(SOD)活性不断提高,大小排序为A2N3>??CK>A2N2>A2N3
【参考文献】

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本文编号:2847695

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