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牛Myf6基因克隆及在成肌细胞中的表达

发布时间:2016-08-25 00:21

  本文关键词:动物转基因技术研究新进展及其在牛育种上的应用,,由笔耕文化传播整理发布。


《东北农业大学》 2010年

牛Myf6基因克隆及在成肌细胞中的表达

汤展毅  

【摘要】: 随着人们膳食结构的不断变化及对健康的日益关注,牛肉品质受到了前所未有的重视,优质、高档牛肉供不应求。生肌家族控制着整个肌肉的发育过程,从前体肌细胞的定型、增殖以及肌纤维的形成,直到个体出生后的成熟和功能的完善,都有生肌调节因子的参与,直接影响着动物的产肉能力与肌肉品质。Myf6是生肌家族中的一员,通过深入研究myf6基因对肌肉发育的调控机制,实现对myf6基因的调控,就能够改变肌肉形成过程中肌纤维的性状,从而提高牛肉品质。 本实验应用PCR方法扩增myf6基因片段,在质粒pIRES2-EGFP的多克隆位点插入myf6基因构建真核表达载体pIRES2-EGFP-myf6。脂质体技术转染鲁西黄牛成纤维细胞和成肌细胞,通过G418筛选出稳定转染的细胞株。利用western blot、Real-time PCR技术检测细胞转染前后myf6基因、肌肉肌酸激酶基因和肌球蛋白轻链基因的表达量变化。 本实验初步建立了脂质体法转染myf6转基因技术,确定了G418对成纤维细胞的最小致死浓度为400μg/ml,对成肌细胞的最小致死浓度为600μg/ml,两种细胞筛选均获得了稳定转染的细胞株。转染后的成纤维细胞和成肌细胞中myf6蛋白和mRNA的表达量提高(P0.01),肌肉肌酸激酶基因mRNA表达量升高(P0.01),肌球蛋白轻链基因的mRNA表达量也提高(P0.01)。细胞形态观察显示转染后的成纤维细胞没有形态变化,未融合为肌管。转染后的成肌细胞融合为肌管。表明构建的真核表达载体pIRES2-EGFP-myf6能在成纤维细胞和成肌细胞中高效表达,并且myf6基因促进了成肌细胞向肌肉细胞分化。 本研究旨在通过基因重组技术构建真核表达载体,使myf6基因在鲁西黄牛成纤维细胞和成肌细胞中表达,建立myf6基因转染细胞的技术基础。获得了myf6基因对两种细胞的分化影响的数据。本研究得到的稳定转染myf6基因的细胞株为下一步进行转myf6基因肉牛体细胞克隆提供了重要的实验材料。

【关键词】:
【学位授予单位】:东北农业大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2010
【分类号】:S823;Q78
【目录】:

  • 摘要8-9
  • Abstract9-10
  • 1 引言10-21
  • 1.1 MRF 家族的发现与重要意义10
  • 1.2 MRF 家族成员10-13
  • 1.2.1 MyoD 基因10-11
  • 1.2.2 Myf5 基因11-12
  • 1.2.3 MyoG 基因12-13
  • 1.3 Myf6 基因研究13-15
  • 1.3.1 Myf6 基因的分子结构13
  • 1.3.2 Myf6 基因的功能13-14
  • 1.3.3 myf6 基因在分化中的作用14
  • 1.3.4 Myf6 基因的定位14-15
  • 1.3.5 不同物种中Myf6 基因15
  • 1.4 Myf6 基因应用前景及展望15-17
  • 1.4.1 在遗传育种方面的应用15-16
  • 1.4.2 在肌肉的再生方面的应用16
  • 1.4.3 在疾病治疗方面的应用16-17
  • 1.5 转基因牛的研究17-19
  • 1.5.1 动物转基因技术主要方法17-18
  • 1.5.2 转基因牛的研究18
  • 1.5.3 转基因牛的应用18-19
  • 1.6 研究的目的和意义19-21
  • 2 材料与方法21-33
  • 2.1 实验材料21-22
  • 2.1.1 主要实验仪器21
  • 2.1.2 主要实验材料与试剂21-22
  • 2.2 试验方法22-33
  • 2.2.1 Myf6 基因的克隆与测序22-26
  • 2.2.2 真核表达载体pIRES2-EGFP-myf6 的构建26-28
  • 2.2.3 牛成肌细胞的培养和鉴定28
  • 2.2.4 重组质粒pIRES2-EGFP-myf6 表达载体瞬时转染牛成纤维细胞和成肌细胞28-29
  • 2.2.5 成纤维细胞和成肌细胞最小致死量测定29
  • 2.2.6 重组质粒pIRES2-EGFP-myf6 表达载体稳定转染牛成纤维细胞和成肌细胞29
  • 2.2.7 转染细胞的显微镜检测29
  • 2.2.8 Western Blot 检测myf6 基因蛋白表达29-30
  • 2.2.9 Real time PCR 检测相关基因表达30-33
  • 3 结果与分析33-45
  • 3.1 Myf6 基因的PCR 扩增33
  • 3.2 阳性重组子pMD18-M 的双酶切鉴定33-34
  • 3.3 Myf6 基因的序列测定34
  • 3.4 真核表达载体pIRES2-EGFP-myf6 的双酶切鉴定34-35
  • 3.5 成肌细胞的鉴定35-36
  • 3.6 转染细胞的荧光检测36-38
  • 3.6.1 转染细胞的荧光检测36-37
  • 3.6.2 稳定转染后细胞形态观察37-38
  • 3.7 G418 对牛皮肤成纤维细胞最小致死量的确定38
  • 3.8 Western Blot 检测myf6 基因蛋白表达38-40
  • 3.8.1 Western Blot 检测转染后成纤维细胞中myf6 基因的蛋白表达38-39
  • 3.8.2 Western Blot 检测转染后成肌细胞中myf6 基因的蛋白表达39-40
  • 3.9 实时荧光RT-PCR 检测相关基因表达40-45
  • 3.9.1 RT-PCR 检测成纤维细胞相关基因的表达40-42
  • 3.9.2 RT-PCR 检测转染后成肌细胞相关基因的表达42-45
  • 4 讨论45-50
  • 4.1 Myf6 基因获得和真核表达载体的构建45-46
  • 4.1.1 Myf6 基因获得45
  • 4.1.2 真核表达载体构建45-46
  • 4.2 Myf6 基因转染成纤维细胞46-47
  • 4.2.1 转染方法的选择46
  • 4.2.2 转染条件的选择46-47
  • 4.2.3 Myf6 基因对成纤维细胞的影响47
  • 4.3 Myf6 基因转染成肌细胞47-50
  • 4.3.1 成肌细胞的鉴定47
  • 4.3.2 G418 筛选稳定转染细胞47-48
  • 4.3.3 荧光定量PCR 技术48
  • 4.3.4 Myf6 基因对成肌细胞的影响48-50
  • 5 结论50-51
  • 致谢51-52
  • 参考文献52-56
  • 攻读硕士学位期间发表的学术论文56
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    本文编号:102515

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